基于 Hyperion 组织的质谱成像系统，可在石蜡包埋组织切片上同时检测数十种生物标志物，绘制高分辨率的单细胞图谱。无需同位素标记，无荧光串扰，为肿瘤免疫微环境研究提供全景式洞察。
改善人类健康是我们肩负的重大使命。它驱动着我们不断把新的科学发现转化为更有效的临床治疗方法，这需要艰辛的付出以及创新的技术手段来解决那些最棘手的问题。
改变疾病治疗和最终治愈的过程，需要全面了解复杂的细胞表型及其在组织微环境空间结构中的相互关系。为了迎接这个巨大的挑战，我们引入了 Hyperion™ 组织质谱成像系统。
该系统颠覆传统，助您全面系统地分析组织内复杂的细胞表型及其相互关系，为您提供前所未有的新型成像分析方案。系统采用尖端高科技技术 —— 成像质谱流式技术（Imaging Mass Cytometry, IMC），将质谱流式超高检测通道数量的优势在组织成像研究中最大化，其性能远远超越了传统的免疫组化或免疫荧光技术。
注：Hyperion 系统包含一个具有完全功能的 Helios™ 质谱流式细胞仪。除系统外，我们还为您提供一系列经病理学研究验证的 Maxpar® 金属标签抗体以及配套的图像采集、数据分析软件。
工作原理：将染色后的组织切片放于 Hyperion 系统内，选择感兴趣的区域。通过 213nm 脉冲激光扫描组织并聚焦至 1μm² 直径的斑点大小，对样本上的金属标签元素进行采样，并通过氩气将其送入 Helios™ 质谱流式细胞仪分析。同时测量与每个斑点相关的金属同位素并将其与每个斑点的位置进行索引，顺序扫描线最终产生整个组织或感兴趣区域中所有靶蛋白的强度图。
案例一：淋巴瘤的应用——血管免疫母细胞T细胞淋巴瘤的免疫抑制微环境及潜在治疗靶点。Blood Cancer Journal 期刊发表相关文章，揭示 RR-AITL 患者中的独特细胞状态和空间结构。南京傲因生物有幸参与其中，提供空间蛋白检测服务。
弥漫大B细胞淋巴瘤中CAR T细胞治疗后的肿瘤免疫结构与临床结果的关联。由陈教授团队揭示，相关论文发表于 Molecular Therapy 科学期刊。南京傲因生物参与了其中成像质谱流式的实验和数据分析工作。
案例二：实体肿瘤组织上的应用——利用成像质谱细胞术（IMC）空间蛋白组学技术，系统揭示了靶向CLDN18.2的IL-7/XCL1武装型CAR-T细胞（RD07）在消化道肿瘤中的疗效机制及其对肿瘤微环境（TME）的空间重塑作用，相关研究发表于 Signal Transduction and Targeted Therapy 期刊。
IMC 分析平台将质谱流式的高维分析与传统组织学相结合，在癌症病理学中具有真正的转化潜力。从肿瘤的 IMC 分析获得的信息很可能与基因组学技术的信息高度互补。另一个主要发展领域是肿瘤免疫学：在高参数空间中对浸润性免疫细胞进行分类同时保持其空间定位，可能会对宿主反应产生新的见解，并指导适当的免疫疗法选择。
[1] Zhu, M., et al. (2024). Single-cell transcriptomic and spatial analysis reveal the immunosuppressive microenvironment in relapsed/refractory angioimmunoblastic T-cell lymphoma. Blood Cancer Journal, 14, 218.
[2] Jin, J., et al. (2024). High-multiplex single-cell imaging analysis reveals tumor immune contexture associated with clinical outcomes after CAR T cell therapy. Molecular Therapy, 32(5), 1252–1265.
[3] Zhao, X., et al. (2026). Efficacy and immunomodulatory effect of Claudin18.2-specific IL-7/XCL1 armed CAR-T cells in digestive tract cancer. Signal Transduction and Targeted Therapy, 11, 123.
以金属标签代替荧光标签，结合飞行时间质谱，实现单细胞 40+ 参数的同时检测。深耕血液、肿瘤和组织样本，揭示异质性、稀有细胞群与动态变化，为药物机制研究提供无与伦比的深度数据。
质谱流式细胞术（Mass Cytometry，也称 CyTOF）是一种将流式细胞技术与质谱分析技术结合在一起的新技术。这种新的融合技术能够在单细胞水平同时分析超过 50 种细胞参数，能够分析的参数包括蛋白质、核酸甚至小分子。它继承了传统流式细胞仪的高速分析特点，又具有质谱检测的高分辨能力，是流式细胞技术一个新的发展方向。
质谱流式采用金属同位素标记的特异性抗体来标记细胞表面和内部蛋白。标记好的细胞通过流式细胞技术被分离成单个细胞，并依次进入等离子体炬进行离子化。单细胞形成的离子云被送入飞行时间质谱（TOF），检测出每个细胞上各种金属标签的精确含量，得到单细胞的质谱数据。最后，这些数据会被转换为标准的流式数据。
质谱流式细胞技术（CyTOF）是多参数单细胞分析中最先进的技术之一，可应用于药物研发的各个阶段，包括优化药物筛选流程、发现新型标志物、筛选药物有效人群、实现用药后的免疫监测和预测等。传统流式细胞技术因自身通道数量有限和串色等问题，限制了其在复杂单细胞研究中的应用。而质谱流式细胞技术可以在有限样本的条件下同时检测 42 种以上不同标志物，使得研究更全面、深入。
在不久的将来，我们将致力于开发能够预测细胞行为随时间动态变化的分析方法，并期望这些工具能够在复杂的组织环境中实现单细胞水平上的时间依赖性测量。这类技术将提供有关特定细胞健康状态的关键信息，并指导针对特定疾病状态的精准治疗。
[1] Tong, Z., et al. (2025). Single-Cell Multi-Omics Identifies Specialized Cytotoxic and Migratory CD8+ Effector T Cells in Acute Myocarditis. Circulation, 152(14), 1003–1022.
[2] Dong, L., et al. (2022). Proteogenomic characterization identifies clinically relevant subgroups of intrahepatic cholangiocarcinoma. Cancer Cell, 40(1), 70–87.
针对磷酸化、乙酰化、泛素化等翻译后修饰，建立单细胞水平的蛋白修饰检测工作流。结合算法模型解读信号通路激活状态，在肝细胞癌等难治性肿瘤中已展示出独特应用价值，为精准药物开发提供全新视角。
将蛋白质组和蛋白质修饰组的研究下放到具体的细胞分型和与肿瘤的空间位置关系上，在研究上这可以带来以下三大核心优势：
本方案采用多组学联合验证的策略，具体设计思路如下：
案例一 肝细胞癌的应用——重庆大学附属肿瘤医院的李咏生团队在 AACR 期刊 Cancer Immunology Research 发表研究论文。南京傲因生物参与联合 CyTOF、MS 和 IMC 的实验和数据分析工作。通过此策略初步绘制 HBV+ 肝细胞癌（HCC）的 PTM 景观，并基于单细胞蛋白磷酸化特征鉴定出与 HCC 临床预后和免疫治疗反应密切相关的 M2 巨噬细胞新亚型。
案例二 脂肪肝的应用——江苏省中医院周希乔团队在 Genome Medicine 发表研究。该研究通过 CyTOF 高维免疫分型、蛋白质组学与磷酸蛋白质组学分析，发现了 MASLD 中 AGXT2 调控的甘氨酸代谢通路和 PYCR3 调控的脯氨酸代谢通路两条严重受损的氨基酸代谢途径。利用 IMC 进行空间单细胞蛋白质组学分析，最终鉴定出一类 AGXT2 和 PYCR3 双阴性的巨噬细胞亚群。
[1] Zhao, H., et al. (2025). Single-Cell Analysis of Posttranslational Modifications Identifies Immunosuppressive Macrophage Subtypes in the HBV-Positive Hepatocellular Carcinoma Microenvironment. Cancer Immunology Research, 13(8), 1303–1317.
[2] Lv, T., et al. (2026). Multi-omics and spatial proteomic profiling reveal novel AGXT2⁻PYCR3⁻ macrophages and their phenotypes in metabolic dysfunction-associated steatotic liver disease. Genome Medicine.
自主研发的双镜头 AI 药物发现平台，同步追踪药物在体内的分布与靶点结合效率。在 ADC 抗体药物结合、内化、降解、发挥作用的完整机制链路上提供前所未有的分辨率，赋能差异化管线设计。
针对传统药代检测方法无法同时精准评估抗体组织分布与单细胞靶向效率的痛点，我们开发了"双镜头"ADC试验方案。该方案采用创新的荧光-金属双重标记抗体平台，结合活体成像与成像质谱流式技术（IMC），实现从宏观器官定位到微观单细胞原位定量的一站式验证。
核心优势：揭示肿瘤内与器官内的细胞异质性，解答"药被谁吃了"和"谁被激活了"的关键问题，支持作用机理（MOA）主张，为临床开发提供差异化故事。
在过去的临床项目经验中，我们发现表达抗体药物对应抗原的细胞系往往不止肿瘤一种。以HER2靶点为例，它不仅在乳腺癌细胞上表达，在免疫细胞上也广泛存在。这意味着肿瘤中吸收的HER2-ADC并非仅被肿瘤细胞摄取。传统利用荧光抗体做药代实验的方法，无法准确告知抗体药物接触的具体细胞类型。因此，我们创造了在各组织器官示踪抗体药物的需求，以准确评估非靶向摄取及潜在的毒性风险。
本方案在抗体药物上添加双重示踪技术：
验证BCL2靶向药物在体内是否真的"靶向"NE高亚型肿瘤细胞——由南京医科大学第一附属医院丁强教授团队、复旦大学上海癌症中心余科达教授团队联合开展的研究，揭示了男性乳腺癌（MBC）的两种分子亚型及其独特的神经内分泌与免疫特征，相关论文发表于 Journal of Advanced Research 期刊。南京傲因生物参与了其中成像质谱流式的实验和数据分析工作。
由陈教授团队揭示了弥漫大B细胞淋巴瘤（DLBCL）中CAR T细胞治疗后的肿瘤免疫结构与临床结果的关联，相关论文发表于 Molecular Therapy 科学期刊。该研究利用IMC技术系统描绘了DLBCL微环境与CAR-T疗效的关联，发现了T细胞耗竭（TIM3⁺）、成纤维细胞空间邻近等关键预后因素。
双镜头方案（活体荧光示踪 + 金属标签IMC）正是为破解"回输的CAR-T vs. 内源性T细胞无法区分"、"CAR-T何时到达肿瘤、持续多久一概不知"、"成纤维细胞是屏障还是伴随现象"、"TIM3靶点阻断是否有效"等四大瓶颈而生，为"CAR-T + 免疫检查点抑制剂"联合方案提供临床前"药代-靶点-功能-空间"四位一体的完整证据链。
[1] Sun, H., et al. (2026). Single-cell multi-omics analysis reveals two molecular subtypes of human male breast cancer with distinct neuroendocrine and immune characteristics. Journal of Advanced Research.
[2] Jin, J., et al. (2024). High-multiplex single-cell imaging analysis reveals tumor immune contexture associated with clinical outcomes after CAR T cell therapy. Molecular Therapy, 32(5), 1252–1265.
面向质谱流式和成像质谱流式应用，覆盖肿瘤免疫、感染、自身免疫、神经科学等热门研究领域。提供经过严格验证的高质量抗体，加速客户项目落地。